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Procedura generale per il legame di una biomolecola al pozzetto coattato con Concanavalina A
- diluire la biomolecola ( campione) alla concentrazione di 0,5 - 5 µg/ml in un appropriato tampone a pH neutro. Il tampone dovrebbe contenere 1mM Ca++ e 1mM Mn++ ; infatti questi ioni favoriscono l'interazione dei gruppi zuccherini presenti nella biomolecola con la Concanavalina A.
- procedere con un'incubazione: i tempi e la temperatura di reazione dipendono dal tipo di biomolecola
- lavare 4 volte per rimuovere il materiale non legato
- a questo punto è possibile proseguire il test a seconda delle esigenze dell'esperimento:
- rilevare la biomolecola legata
- utilizzare la biomolecola legata per rilevare una contro molecola specifica
test di valutazione delle piastre coattate con Concanavalina A
- Preparare delle concentrazioni a scalare da 100 ng/ml fino a 12.5 ng/ml di AHIgG-Pod in una soluzione costituita da 1 mM CaCl2 2 H2O + 1 mM MnCl2 4 H2O in 0.1M sodio fosfato pH 7.2 + 0.2% BSA
- Aggiungere 100 µl di ogni soluzione ai pozzetti di una piastra coattata con Concanavalina A ed incubare a 37° per 2 ore. Aggiungere le stesse soluzioni ad una piastra coattata con Albumina come confronto per valutare la specificità del legame. Dispensare in alcuni pozzetti solo tampone come blank di reazione
- Svuotare i pozzetti e lavare 4 volte con 0,1M PBS pH 7,2 + 0,05% Tween® 20,
- Aggiungere 100 µl di TMB ad ogni pozzetto ed incubare per 15 minuti a temperatura ambiente
- Bloccare la reazione aggiungendo 100 µl di acido solforico 1 N e leggere la densità ottica a 450 nm.
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